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ATCC細(xì)胞的原代培養(yǎng)、傳代培養(yǎng)、凍存和復(fù)蘇實(shí)驗(yàn)方法步驟

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點(diǎn)擊量: 201167 來源: 上海拜力生物科技有限公司
 一、原代細(xì)胞培養(yǎng) 
 
(一)原理 細(xì)胞培養(yǎng)(Cell culture)是模擬機(jī)體內(nèi)生理?xiàng)l件,將細(xì)胞從機(jī)體中取出,在人工條件下使其生存、生長(zhǎng)、繁殖和傳代,進(jìn)行細(xì)胞生命過程、細(xì)胞癌變、細(xì)胞工程等問題的研究。近年來,廣泛地應(yīng)用于分子生物學(xué)、遺傳學(xué)、**學(xué)、腫瘤學(xué)、細(xì)胞工程等領(lǐng)域,發(fā)展成一種重要生物技術(shù),并取得顯著成就。由體內(nèi)直接取出組織或細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)叫原代培養(yǎng)。原代培養(yǎng)細(xì)胞離體時(shí)間短,性狀與體內(nèi)相似,適用于研究。一般說來,幼稚狀態(tài)的組織和細(xì)胞,如:動(dòng)物的胚胎、幼仔的臟器等更容易進(jìn)行原代培養(yǎng)。 
 
 (二)操作 1.取材 用頸椎脫位法使乳兔迅速死亡。然后,把整個(gè)動(dòng)物浸入盛有75%乙醇的燒杯中數(shù)秒鐘**,取出后放在大平皿中攜入超凈臺(tái)。用消過毒的剪刀剪開用碘酒和乙醇再次**后的皮膚,剖腹取出肝臟或腎臟。置于無菌平皿中。 2.切割 用**的PBS液將取出的臟器清洗三次,然后用眼科手術(shù)剪刀仔細(xì)將組織反復(fù)剪碎,直到成1mm3左右的小塊,再用PBS清洗,洗到組織塊發(fā)白為止。移入無菌離心管中,靜置數(shù)分鐘,使組織塊自然沉淀到管底,棄去上清。 3.消化、接種培養(yǎng) 吸取0.25%胰蛋白酶一0.02%EDTA混合消化液1ml,加入離心管中,與組織塊混勻后,加上管口塞子,37℃水浴中消化8~10分鐘,每隔幾分鐘搖動(dòng)一下試管,使組織與消化液充分接觸,靜止,吸去上清,向離心管中加入5~10ml含5%小牛血清的MEM培養(yǎng)基,用吸管吹打混勻,移入二個(gè)培養(yǎng)瓶中,置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。  
 
(三)結(jié)果 細(xì)胞接種后一般幾小時(shí)內(nèi)就能貼壁,并開始生長(zhǎng),如接種的細(xì)胞密度適宜,5天到一周即可形成單層。 
 
 二、傳代細(xì)胞培養(yǎng)  
 
(一)原理 體外培養(yǎng)的原代細(xì)胞或細(xì)胞株要在體外持續(xù)地培養(yǎng)就必須傳代,以便獲得穩(wěn)定的細(xì)胞株或得到大量的同種細(xì)胞,并維持細(xì)胞種的延續(xù)。培養(yǎng)的細(xì)胞形成單層匯合以后,由于密度過大生存空間不足而引起營(yíng)養(yǎng)枯竭,將培養(yǎng)的細(xì)胞分散,從容器中取出,以1:2或l:3以上的比率轉(zhuǎn)移到另外的容器中進(jìn)行培養(yǎng),即為傳代培養(yǎng)。 細(xì)胞“一代”指從細(xì)胞接種到分離再培養(yǎng)的一段期間,與細(xì)胞世代或倍增不同。在一代中,細(xì)胞培增3~6次。細(xì)胞傳代后,一般經(jīng)過三個(gè)階段:游離期、指數(shù)增生期和停止期。常用細(xì)胞分裂指數(shù)表示細(xì)胞增殖的旺盛程度,即細(xì)胞群的分裂相數(shù)/100個(gè)細(xì)胞。一般細(xì)胞分裂指數(shù)介于0.2%~0.5%,腫瘤細(xì)胞可達(dá)3~5%。細(xì)胞接種2~3天分裂增殖旺盛,是活力*好時(shí)期,稱指數(shù)增生期(對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期),適宜進(jìn)行各種試驗(yàn)。  
 
(二)操作 1.將長(zhǎng)成單層的原代培養(yǎng)細(xì)胞或HeLa細(xì)胞從二氧化碳培養(yǎng)箱中取出,在超凈工作臺(tái)中倒掉瓶?jī)?nèi)的培養(yǎng)液,加入少許消化液。(以液面蓋住細(xì)胞為宜),靜置5~10分鐘。2.在倒置鏡下觀察被消化的細(xì)胞,如果細(xì)胞變園,相互之間不再連接成片,這時(shí)應(yīng)立即在超凈臺(tái)中將消化液倒掉,加入3~5ml新鮮培養(yǎng)液,吹打,制成細(xì)胞懸液。 3.將細(xì)胞懸液吸出2ml左右,加到另一個(gè)培養(yǎng)瓶中并向每個(gè)瓶中分別加3ml左右培養(yǎng)液,蓋好瓶塞,送回二氧化碳培養(yǎng)箱中,繼續(xù)進(jìn)行培養(yǎng)。  
 
(三)結(jié)果 一般情況,傳代后的細(xì)胞在2小時(shí)左右就能附著在培養(yǎng)瓶壁上,2~4天就可在瓶?jī)?nèi)形成單層,需要再次進(jìn)行傳代。 
 
【器材及液體的準(zhǔn)備和無菌操作的注意事項(xiàng) 】 
 
(一)器材和液體的準(zhǔn)備 細(xì)胞培養(yǎng)用的玻璃器材,如:培養(yǎng)瓶、吸管等在清洗干凈以后,裝在鋁盒和鐵筒中,120℃,2小時(shí)干烤**后備用;手術(shù)器材、瓶塞、配制好的PBS液用**鍋15磅,20分鐘蒸氣**;MEM培養(yǎng)液、小牛血清、消化液用G6濾器負(fù)壓抽濾后備用。 
 
 (二)無菌操作中的注意事項(xiàng) 在無菌操作中,一定要保持工作區(qū)的無菌清潔。為此,在操作前要認(rèn)真地洗手并用75%乙醇**。操作前20~30分鐘起動(dòng)超凈臺(tái)吹風(fēng)。操作時(shí),嚴(yán)禁說話,嚴(yán)禁用手直接拿無菌的物品,如瓶塞等,而要用器械,如止血鉗、鑷子等去拿。培養(yǎng)瓶要在超凈臺(tái)內(nèi)才能打開瓶塞,打開之前用乙醇將瓶口**,打開后和加塞前瓶口都要在酒精燈上燒一下,打開瓶口后的操作全部都要在超凈臺(tái)內(nèi)完成。操作完畢后,加上瓶塞,才能拿到超凈臺(tái)外。使用的吸管在從**的鐵筒中取出后要手拿末端,將**在火上燒一下,戴上膠皮**,然后再去吸取液體??傊?,在整個(gè)無菌操作過程中都應(yīng)該在酒精燈的周圍進(jìn)行。


ATCC細(xì)胞  細(xì)胞凍存方法
主要操作步驟為:
 
(1)選擇處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,在凍存前***好換液。將多個(gè)培養(yǎng)瓶中的細(xì)胞培養(yǎng)液去掉,用0.25% 胰蛋白酶消化。適時(shí)去掉胰蛋白酶,加入少量新培養(yǎng)液。用吸管吸取培養(yǎng)液反復(fù)吹打瓶壁上的細(xì)胞,使其成為均勻分散的細(xì)胞懸液。懸浮生產(chǎn)細(xì)胞則不要消化處理。然后將細(xì)胞收集于離心管中離心(1000r/min,10分鐘)。
 
(2)去上清液,加入含20%小牛血清的完全培養(yǎng)基,于4℃預(yù)冷15分鐘后,逐滴加入已無菌的DMSO或甘油,用吸管輕輕吹打使細(xì)胞均勻,細(xì)胞濃度為3×106~1×107/mL之間。
 
(3)將上述細(xì)胞分裝于安瓿或?qū)S美鋬鏊芰瞎苤?,安瓿裝1~1.5mL在火焰噴燈上封口,封口處要完全封閉,圓滑無勾。冷凍管要將蓋子蓋緊,并標(biāo)記好細(xì)胞名稱和凍存日期,同時(shí)作好登記(日期、細(xì)胞種類及代次、凍存支數(shù))。
 
(4)將裝好細(xì)胞的安瓿或凍存管裝入沙布袋內(nèi);置于液氮容器頸口處存放過夜,次日轉(zhuǎn)入液氮中。采用控制降溫速度的方法也可采用下列步驟:先將安瓿置入4℃冰箱中2~3小時(shí),再移至冰箱冷凍室內(nèi)3~4小時(shí)(此步可省略),再吊入液氮容器頸氣態(tài)部分存放2小時(shí),*后沉入液氮中。
 
細(xì)胞凍存在液氮中可以長(zhǎng)期保存,但為妥善起見,凍存半年后,*好取出一只安瓿細(xì)胞復(fù)蘇培養(yǎng),觀察生長(zhǎng)情況,然后再繼續(xù)凍存。

細(xì)胞的復(fù)蘇
一、細(xì)胞復(fù)蘇的原則
在實(shí)際操作中,凍存細(xì)胞要進(jìn)行復(fù)蘇,再培養(yǎng)傳代。復(fù)蘇細(xì)胞一般采用快速融化法。以保證細(xì)胞外結(jié)晶快速融化,以避免慢速融化水分滲入細(xì)胞內(nèi),再次形成胞內(nèi)結(jié)晶損傷細(xì)胞。
二、細(xì)胞復(fù)蘇的主要操作步驟
(1)佩戴眼鏡和手套,從液氮罐中取出安瓿或冷凍管。
(2)迅速放入38℃水浴中,并不時(shí)搖動(dòng),在1分鐘內(nèi)使其完全融化,然后在無菌下取出細(xì)胞。
(3)在1000r/min速度下離心5~10分鐘,棄去上層液,加入適量培養(yǎng)液后接種于培養(yǎng)瓶中,接種濃度1×109/L,置37℃溫箱靜置培養(yǎng),次日更換一次培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng),觀察生長(zhǎng)情況。若細(xì)胞密度較高,及時(shí)傳代?;驘o需離心直接將細(xì)胞加入瓶中,并加入培養(yǎng)基貼壁培養(yǎng)12~24小時(shí)后,充去上清,換入新鮮培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。
三、注意事項(xiàng)
在細(xì)胞復(fù)蘇操作時(shí),應(yīng)注意融化凍存細(xì)胞速度要快,可不時(shí)搖動(dòng)安瓿或冷凍管,使之盡快通過*易受損的溫度段(-5~0℃)。這樣復(fù)蘇的凍存細(xì)胞存活率高,生長(zhǎng)及形態(tài)良好。然而,由于凍存的細(xì)胞還受其他因素的影響,有時(shí)也會(huì)有部分細(xì)胞死亡。此時(shí),可將不貼壁、飄浮在培養(yǎng)液上(已死亡)的細(xì)胞輕輕倒掉,再補(bǔ)以適量的新培養(yǎng)液,也會(huì)獲得較為滿意的結(jié)果。




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